Superação de dormência em sementes de Butia capitata

Aiming to identify efficient conditions to break dormancy in Butia capitata (Mart.) Becc. seeds sown in vitro and in an incubator tests were conducted with mechanical scarification in pre-sowing, by partial or total opening of the seed embryonic cavity, isolated of the endocarps. The embryonic cavity opening accelerated germination significantly, especially when there was total removal of the seed cap, allowing germination on average 90% of embryos, regardless of the provenance of the accessions. The seed dormancy of B. capitata seems to be related to the mechanical barrier imposed by the seed tissues that hamper the embryo development, suggesting mechanical exogenous dormancy.

Com o objetivo de identificar métodos eficientes para a superação da dormência de sementes de B. capitata (Mart.) Becc. semeadas in vitro e em germinador, foram conduzidos testes com escarificação mecânica em pré-semeadura, através da abertura parcial ou total da cavidade embrionária de sementes isoladas dos endocarpos. A abertura da cavidade embrionária acelerou significativamente a germinação, principalmente quando houve retirada total do opérculo da semente, permitindo a germinação de, em média, 90% dos embriões, independentemente da procedência dos acessos. A dormência das sementes de B. capitata parece estar relacionada com a barreira mecânica imposta pelos tecidos da semente que dificultam o desenvolvimento do embrião, o que sugere dormência exógena mecânica.

Superação de dormência em sementes de Butia capitata

Aiming to identify efficient conditions to break dormancy in Butia capitata (Mart.) Becc. seeds sown in vitro and in an incubator tests were conducted with mechanical scarification in pre-sowing, by partial or total opening of the seed embryonic cavity, isolated of the endocarps. The embryonic cavity opening accelerated germination significantly, especially when there was total removal of the seed cap, allowing germination on average 90% of embryos, regardless of the provenance of the accessions. The seed dormancy of B. capitata seems to be related to the mechanical barrier imposed by the seed tissues that hamper the embryo development, suggesting mechanical exogenous dormancy.

Com o objetivo de identificar métodos eficientes para a superação da dormência de sementes de B. capitata (Mart.) Becc. semeadas in vitro e em germinador, foram conduzidos testes com escarificação mecânica em pré-semeadura, através da abertura parcial ou total da cavidade embrionária de sementes isoladas dos endocarpos. A abertura da cavidade embrionária acelerou significativamente a germinação, principalmente quando houve retirada total do opérculo da semente, permitindo a germinação de, em média, 90% dos embriões, independentemente da procedência dos acessos. A dormência das sementes de B. capitata parece estar relacionada com a barreira mecânica imposta pelos tecidos da semente que dificultam o desenvolvimento do embrião, o que sugere dormência exógena mecânica.

Superação de dormência em sementes de Butia capitata

Aiming to identify efficient conditions to break dormancy in Butia capitata (Mart.) Becc. seeds sown in vitro and in an incubator tests were conducted with mechanical scarification in pre-sowing, by partial or total opening of the seed embryonic cavity, isolated of the endocarps. The embryonic cavity opening accelerated germination significantly, especially when there was total removal of the seed cap, allowing germination on average 90% of embryos, regardless of the provenance of the accessions. The seed dormancy of B. capitata seems to be related to the mechanical barrier imposed by the seed tissues that hamper the embryo development, suggesting mechanical exogenous dormancy.

Com o objetivo de identificar métodos eficientes para a superação da dormência de sementes de B. capitata (Mart.) Becc. semeadas in vitro e em germinador, foram conduzidos testes com escarificação mecânica em pré-semeadura, através da abertura parcial ou total da cavidade embrionária de sementes isoladas dos endocarpos. A abertura da cavidade embrionária acelerou significativamente a germinação, principalmente quando houve retirada total do opérculo da semente, permitindo a germinação de, em média, 90% dos embriões, independentemente da procedência dos acessos. A dormência das sementes de B. capitata parece estar relacionada com a barreira mecânica imposta pelos tecidos da semente que dificultam o desenvolvimento do embrião, o que sugere dormência exógena mecânica.

Propagação in vitro de Limonium latifolium Kuntze (Plumbaginaceae)

Limonium latifolium Kuntze is a cut flower commercialy propagated in vitro. To develop and improve the micropropagation protocol, a sequence of assays was developed to evaluate performance of node explants; effect of cytokinins concentration (kinetin-KlN and 6-benzyl-aminopurin-BA) on the regeneration rate; the presence of BA during the multiplication phase; concentration of naphthaleneacetic acid-NAA and indole3-butyric acid-IBA on the rooting phase and procederes for the acciimatiwtion in vitro. The micropropagation was done at commercial levei using inflorescence nades explants. By the regeneration phase the best results were obtained with BA at 0.7mg/l for 35 days in MS médium. The multiplication phase takes 35 days and shows satisfactory results with BA at 0.2mg/l , with the rate of 4 plantiets/explant. The rooting phase is takes 30 days in MS medium with IBA at 1mg/l , with good survival scores after transfer to in vivo. The acciimatiwtion hás made under plastic covering, inside greenhouse with room temperature and intermitent mist, using flats with 242 cells of 10cm³ each, filled with sterilized carbonized rice hulis. Every two weeks the plants were fertigated with commercial fertilizer (15:5:15 + micronutrients) at 0.5g/l . The in vitro process takes 100 - 120 days and one explant originates 15 - 30 plants.

Limonium latifoKum Kuntze é uma flor de corte cuja produção comercial de mudas é viabilizada através do cultivo de tecidos. Com o objetivo de aperfeiçoar o protocolo para a propagação clonal in vitro, fez-se uma sequência de estudos em que foram avaliados: viabilidade do uso de segmentos nadais do eixo da inflorescência imatura como explantes; tipos e concentrações de citocininas (cinetina-KIN e benzilaminopurina-BAP) na regeneração; tipos e concentrações de auxinas (ácido naftalenoacético-ANA e ácido indolbutírico-AIB) na fase de enraizamento in vitro; e técnicas de aclimatizaçao. Explantes oriundos de segmentos nadais da parte apical do eixo da inflorescência imatura são viáveis para a micropropagaçao de L. latifolium. Na fase de regeneração, os melhores resultados foram obtidos com o uso de meio de cultivo MS com 0,7mg de BAP/l por 35 dias. A fase de enraizamento m vitro foi feita com a manutenção dos explantes por 30 dias em meio MS acrescido de 1mg de AIB/l , garantindo ótimo índice de sobrevivência após a transferência para in vivo. A aclimatiwção foi feita sob cobertura plástica, em bancada de casa de vegetação, à temperatura ambiente e com irrigação por nebulização. Utilizaram-se, como recipientes, bandejas multicelulares de isopor, com 242 células e aproximadamente 10cm³ cada, preenchidas com casca de arroz carbonizada e esterilizada. As mudas receberam, quinzenalmente, adubação líquida com 0,5g/l de um adubo comercial (15:5:l5+micronutrientes). O processo in vitro dura 100 a 120 dias e um explante origina 15 a 30 mudas.

Propagação in vitro de Limonium latifolium Kuntze (Plumbaginaceae)

Limonium latifolium Kuntze is a cut flower commercialy propagated in vitro. To develop and improve the micropropagation protocol, a sequence of assays was developed to evaluate performance of node explants; effect of cytokinins concentration (kinetin-KlN and 6-benzyl-aminopurin-BA) on the regeneration rate; the presence of BA during the multiplication phase; concentration of naphthaleneacetic acid-NAA and indole3-butyric acid-IBA on the rooting phase and procederes for the acciimatiwtion in vitro. The micropropagation was done at commercial levei using inflorescence nades explants. By the regeneration phase the best results were obtained with BA at 0.7mg/l for 35 days in MS médium. The multiplication phase takes 35 days and shows satisfactory results with BA at 0.2mg/l , with the rate of 4 plantiets/explant. The rooting phase is takes 30 days in MS medium with IBA at 1mg/l , with good survival scores after transfer to in vivo. The acciimatiwtion hás made under plastic covering, inside greenhouse with room temperature and intermitent mist, using flats with 242 cells of 10cm³ each, filled with sterilized carbonized rice hulis. Every two weeks the plants were fertigated with commercial fertilizer (15:5:15 + micronutrients) at 0.5g/l . The in vitro process takes 100 - 120 days and one explant originates 15 - 30 plants.

Limonium latifoKum Kuntze é uma flor de corte cuja produção comercial de mudas é viabilizada através do cultivo de tecidos. Com o objetivo de aperfeiçoar o protocolo para a propagação clonal in vitro, fez-se uma sequência de estudos em que foram avaliados: viabilidade do uso de segmentos nadais do eixo da inflorescência imatura como explantes; tipos e concentrações de citocininas (cinetina-KIN e benzilaminopurina-BAP) na regeneração; tipos e concentrações de auxinas (ácido naftalenoacético-ANA e ácido indolbutírico-AIB) na fase de enraizamento in vitro; e técnicas de aclimatizaçao. Explantes oriundos de segmentos nadais da parte apical do eixo da inflorescência imatura são viáveis para a micropropagaçao de L. latifolium. Na fase de regeneração, os melhores resultados foram obtidos com o uso de meio de cultivo MS com 0,7mg de BAP/l por 35 dias. A fase de enraizamento m vitro foi feita com a manutenção dos explantes por 30 dias em meio MS acrescido de 1mg de AIB/l , garantindo ótimo índice de sobrevivência após a transferência para in vivo. A aclimatiwção foi feita sob cobertura plástica, em bancada de casa de vegetação, à temperatura ambiente e com irrigação por nebulização. Utilizaram-se, como recipientes, bandejas multicelulares de isopor, com 242 células e aproximadamente 10cm³ cada, preenchidas com casca de arroz carbonizada e esterilizada. As mudas receberam, quinzenalmente, adubação líquida com 0,5g/l de um adubo comercial (15:5:l5+micronutrientes). O processo in vitro dura 100 a 120 dias e um explante origina 15 a 30 mudas.