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Tese em Português | VETTESES | ID: vtt-200775

Resumo

COSTA, Tiago Viana da. Produção, extração e armazenamento do sêmen do camarão de água doce Macrobrachium acanthurus. 2015. 85f. Tese (Doutorado em Ciências). Instituto de Zootecnia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica/RJ/Brasil, 2015. Macrobrachium acanthurus ocorre em todo continente americano, ocupa rios de água doce e se reproduz próximo à foz, em virtude da dependência da salinidade para reprodução. É uma espécie apreciada pelas populações tradicionais, que através de práticas extrativistas o capturam em suas diversas fases do desenvolvimento. Este camarão apresenta dimorfismo sexual, sendo os machos geralmente maiores que as fêmeas. Os espermatozoides desta espécie são produzidos nos testículos e recebem substâncias nutritivas ao longo do vaso deferente, até serem empacotados em um espermatóforo, que pode ser extraído diretamente da ampola terminal. O processo de criopreservação de espécies nativas, seja para resguardar o patrimônio genético ou induzir a uma maior produção animal pelo processo de inseminação artificial, têm sido utilizado em diversos organismos aquáticos. Em camarões, no entanto, esta biotecnologia não tem sido empregada com sucesso, sendo a maioria delas aplicadas a espécies marinhas. Desta forma, este trabalho teve como objetivo iniciar os estudos com esta espécie nativa e ao contrário de outras pesquisas, não desenvolver um protocolo de congelamento, mas viabilizar práticas para que se alcancem num futuro o sucesso obtido em outros organismos de cultivo. Para tanto foram desenvolvidos três estudos, sendo o primeiro a identificação da melhor voltagem (6,0 Volts), que possibilitou a extração do espermatóforo, sem causar danos ao material seminal e ao animal, bem como o tamanho (18,0 mm de comprimento de cefalotórax) e peso (5,0 g de peso vivo) para contribuição máxima de produção espermática. O segundo estudo foi a determinação de uma dieta, que estimulasse maior produção espermática, sem comprometer a qualidade do espermatóforo para a criopreservação. Para as dietas testadas, um mix entre o alimento fresco, composto por músculo de pescado e lula, e um alimento seco, totalizando 30% de proteína bruta, foi o recomendado, justificado pelo baixo impacto proporcionado na constituição do espermatóforo, entretanto necessitando de mais pesquisas futuras. O terceiro experimento foi dividido em três partes, sendo realizado um teste de toxicidade, onde o metanol 10% e o glicerol 10 e 20%, em um tempo de equilíbrio de 10 minutos apresentaram-se como os menos tóxicos ao material seminal. Na segunda parte foram utilizados quatro curvas de congelamento; duas foram realizadas com equipamento comercial (automatizado) e outras duas em sistema convencional de congelamento, obtendo-se o melhor resultado (21,83% de sobrevivência) no sistema convencional, com o uso de glicerol 10%. Em todos os dois sistemas houve 100% de mortalidade, quando o metanol 10% foi utilizado como crioprotetor. A terceira parte foi composta de um simples teste de sobrevivência espermática em água destilada por 10 dias, estando o material armazenado em refrigerador a 5°C. Os resultados apontaram que por até três dias os espermatozoides se mantém viáveis e podem ser utilizados num processo de fecundação.

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COSTA, Tiago Viana da. Production, extraction and storage of freshwater shrimp Macrobrachium acanthurus semen. 2015. 85f. Thesis (Doctor of Science). Instituto de Zootecnia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica/RJ/Brasil, 2015. Occurring throughout the American continent, occupying freshwater rivers and reproducing near his mouth, because of the dependence of salinity for reproduction, Macrobrachium acanthurus has been appreciated by the traditional populations of these regions, through the capture extractive practices in their various stages of development. This shrimp was sexually dimorphic, with the males generally larger than females. In these, the spermatozoa are produced in the testicles and receive nutrients through the vas deferens to be packaged in Spermatophores that can be extracted directly from the light bulb terminal. The process of cryopreservation of native species, is to protect the genetic heritage or induce increased animal production by artificial insemination procedures, has been used in various aquatic organisms. In shrimp, however, this biotechnology has not been successfully employed, most of them being applied to marine species. Thus, this work had as objective begin studies with this native species and unlike other research, not develop a freezing protocol, but enable practices to achieving a future success obtained in other farming organisms. For this, three studies were developed, and the first identifying themselves as best voltage (6.0 volts) that where possible the extraction of spermatophore, without causing damage to the seminal material and the animal, as well as the size (18.0 mm carapace length) and weight (5.0 g body weight) that these animals could be contributing to the max with sperm production. The second study was to determine a diet that best stimulates a higher sperm production, without however, compromising the spermatophore qualities for cryopreservation. For the diets tested, a mix between fresh food, made up of fish and squid muscle, and a dry food, totaling 30% crude protein, was recommended, justified by the low impact provided in the constitution of spermatophore and requiring future research. The third experiment was divided into three parts, a toxicity test conducted where the 10% methanol and 10 and 20% glycerol in a 10 min equilibration time is presented as the least toxic to the seminal material, and then used in four freezing curves; two were conducted in commercial equipment (automated) and two in conventional freezing system. The best result (21.83% survival) was the conventional system, with the use of 10% glycerol. In all the two systems there was 100% mortality when 10% methanol was used as a cryoprotectant. The third part was composed of a single sperm survival test in distilled water for 10 days, with the material stored in a refrigerator at 5°C. The results showed that up to three days the sperm remains viable and can be used for artificial fertilization.

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