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Tese em Português | VETTESES | ID: vtt-213888

Resumo

A carne de origem suína é a mais consumida no mundo. O Brasil é o quarto maior produtor e exportador. Diante da importância deste tipo de carne para o Brasil é necessário que haja um controle para garantir a qualidade desse produto desde a produção inicial de suínos e principalmente nas indústrias de abate. Doenças podem ser veiculadas por alimentos e essas ocorrem em todo o mundo, sendo responsáveis por hospitalizações e mortes de milhões de pessoas. Dentre os principais agentes, pode ser citado o microrganismo Salmonella spp. sendo os produtos suínos, em muitos casos, apontados como o alimento veiculador dessa bactéria. O objetivo deste trabalho foi isolar e identificar Salmonella spp. em linfonodos mesentéricos suínos e caracterizar o potencial patogênico e o perfil de resistência a antibióticos. Um total de 100 amostras de linfonodos mesentéricos suínos foram coletadas em matadouro localizado na região da Zona da Mata, Minas Gerais, Brasil. As amostras foram submetidas a microbiologia convencional para a identificação da Salmonella. Os isolados foram submetidos à análise moleculares para confirmação do gênero utilizando os genes invA e ompC assim como para a identificação dos genes de virulência. As amostras positivas para Salmonella foram encaminhadas para realização de sorotipagem e realizada a macrorrestrição com enzima Xbal para posterior análise em eletroforese em gel de campo pulsátil (PFGE). Teste fenotípico para resistência a antibióticos foi realizada pelo método de disco difusão para 21 antibióticos e o teste de disco difusão dupla para a detecção de isolados ESBL. Salmonella spp foi identificada em 29 amostras com 3 sorovares encontrados (Derby, Give e Cerro) e um perfil único de virulência (pefA, sipA, sopB, spaN e pagC). Os resultados de macrorrestrição identificaram alta similaridade entre os isolados do sorovar Derby. Resistência a antibióticos dos isolados foi observada em amicacina (7%), ceftriaxona (3%), Polimixina B (97%), ciprofloxacina (79%), tetraciclina (72%), cloranfenicol (55%), ácido nalidíxico (55%), ampicilina (55%), meropenem (3%), sulfonamida (52%), imipenem (34%), azitromicina (7%), amocixilina (52%), enrofloxacina (55%), florfenicol (52%), neomicina (100%). Todas as amostras foram sensíveis a trimetoprim, gentamicina, cefalotina, cefepime, norfloxacina e cotrimaxazol. E todas as amostras foram ESBL negativas. Este trabalho mostrou a existência de cepas de Salmonella spp. patogênicas presentes nos suínos, sendo este animal apontado como um importante disseminador da bactéria, como também a circulação de cepas resistentes a antibióticos nesses animais. Dessa forma, o controle e monitoramento desse patógeno na cadeia produtiva de suínos é de grande importância para se evitar que estes micro-organismos cheguem a mesa dos consumidores gerando assim prejuízos à saúde pública.

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Pork is the most consumed meat in the world. Brazil is the fourth largest producer and exporter. Given the importance of pork meat for Brazil, it is necessary to have a control to guarantee the quality of this product from the initial production and mainly in the slaughtering industries. Diseases can be transmitted by food products an can occur worldwide, accounting for millions of patients, hospitalizations, and deaths. Salmonella spp. is one of the main agents and pork products are often referred to as the food carrier of this bacterium. The main purpose of this work was to isolate and identify Salmonella spp. in porcine mesenteric lymph nodes and characterize the pathogenic potential and antimicrobial resistance profile. A total of 100 samples of porcine mesenteric lymph nodes were collected in a swine slaughterhouse located in the region of Zona da Mata, Minas Gerais, Brazil. The samples were submitted to the detection of Salmonella spp. The isolates were submitted to PCR analysis for confirmation of the pathogen using the invA and ompC genes. PCR was also performed to identify virulence genes. The positive isolates were sent for serotyping and macro-restriction was performed with Xbal for further analysis in pulsed-field gel electrophoresis (PFGE). Phenotypic test for antimicrobial resistance was performed in the isolates through the antimicrobial sensitivity test by disc diffusion method for 22 antibiotics. Using the same method, the ESBL sensitivity test was performed. Salmonella spp was identified in 29 samples and 3 different serovars was found (Derby, Give and Cerro). Also an unique profile was found (pefA, sipA, sopB, spaN e pagC). Gene profiles with high degree of identity were obtained by PFGE, the isolates had 80% of similarity rate between derby serovar. Antimicrobial resistance of the isolates was observed in amikacin (7%), ceftriaxone (3%), polymyxin B (97%), ciprofloxacin (79%), tetracycline (72%), chloramphenicol (55%), nalidixic acid (55%), ampicillin (55%), meropenem (3%), sulfonamide (52%), imipenem (34%), azithromycin (7%), amocixilin (52%), enrofloxacin (55%), florfenicol (52%), neomycin (100%). All samples were sensitive to trimethoprim, gentamicin, cephalothin, cefepime, norfloxacin and cotrimaxazole and all samples were ESBL negative. This work showed the existence of pathogenic strains of Salmonella spp. in pork production, the importance of this food chain as a disseminator of this bacterium and the antibiotic resistance spread among the animals in the food production environment. Therefore, the control and monitoring of this pathogen in the pork production chain is of greatest importance to avoid that these microorganisms reach the food and generates a public health problem.

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