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Produção de curativos de nanofibras a base PVA e colágeno extraído da pele de rã touro (Lithobates catesbeianus)

JOSE CARLOS TRENTO.
Tese em Português | VETTESES | ID: vtt-218272

Resumo

O presente trabalho objetivou produzir nanofibras para a finalidade de uso em regeneração tecidual, utilizando álcool polivinílico (PVA) e colágeno, extraído da pele de rã touro (Lithobates catesbeianus), a partir da técnica de eletrofiação. O colágeno extraído da pele de rã touro foi purificado, e uma porção desse colágeno foi hidrolisado utilizando a enzima Alcalase®, nas seguintes condições: temperatura de 55º C, tempo de 3 horas, concentração enzima:substrato de 1% e pH 6,92. Foram produzidos 4 nanofibras de PVA/Colágeno com diferentes concentrações de colágeno hidrolisado (CH) (0%, 10%, 20% e 30% respectivamente) (m/m) de PVA. O processo de extração e purificação do colágeno foi eficiente e favorável para a produção das nanofibras, apresentando 0,07 ± 0,78 % de matéria mineral e 0,06 ± 0,01 % de material lipídico. O rendimento em base seca observado na extração do colágeno bruto foi de 16,58%. O hidrolisado produzido a partir do colágeno purificado apresentou grau de hidrólise e proteína solúvel de 5,70% e de 53,97 mg mL-1 , respectivamente. A atividade antioxidante do colágeno hidrolisado foi de IC50 6,82 ± 0,09 mg mL-1 , as nanofibras PVA/Colágeno+CH não apresentaram atividade antioxidante. O colágeno hidrolisado e as nanofibras demonstraram atividade antimicrobiana contra a cepa de Staphylococcus aureus. Os curativos produzidos de PVA/COL+CH 0%, 10%, 20% e 30%, demonstraram características físicoquímicas que estão de acordo com a literatura em relação as análises termogravimétricas e Espectroscopia (FTIR). Em relação a microscopia eletrônica de varredura, o filme PVA/COL+CH 10% destacou-se, pois apresentou maior uniformidades nas nanofibras, esse resultado corrobora com os resultados da avaliação mecânica, onde obteve maior porcentagem de elongação. Por fim, os filmes produzidos nessa pesquisa apresentam grande potencial para a sua utilização como curativos epiteliais, sendo um produto de alto valor agregado que poderá ser empregado para auxiliar a regeneração epitelial.
The present research aimed to produce nanofibers for use in tissue regeneration, using polyvinyl alcohol (PVA) and collagen, extracted from the skin of bullfrogs (Lithobates catesbeianus), using the electrospinning technique. The collagen extracted from the bullfrog skin was purified, and a portion of this collagen was hydrolyzed using the Alcalase® enzyme, under the following conditions: temperature of 55º C, time of 3 hours, enzyme:substrate concentration of 1% and pH 6.92. Four PVA/Collagen nanofibers were produced with different concentrations of hydrolyzed collagen (CH) (0%, 10%, 20% and 30% respectively) (m/m) of PVA. The collagen extraction and purification process were efficient and favorable to produce nanofibers, presenting 0.07 ± 0.78 % of ash and 0.06 ± 0.01 % of lipid material. The dry basis yield observed in the extraction of crude collagen was 16.58%. The hydrolysate produced from purified collagen showed a degree of hydrolysis and soluble protein of 5.70% and 53.97 mg mL-1 , respectively. The antioxidant activity of the hydrolyzed collagen was IC50 6.82 ± 0.09 mg mL-1 , the PVA/Collagen+CH nanofibers showed no antioxidant activity. Hydrolyzed collagen and nanofibers demonstrated antimicrobial activity against the Staphylococcus aureus strain. The nanofibers produced from PVA/COL+CH 0%, 10%, 20% and 30% showed physicochemical characteristics that agree with the literature regarding thermogravimetric analysis and Spectroscopy (FTIR). In relation to scanning electron microscopy, the PVA/COL+CH 10% nanofiber stood out, as it presented greater uniformity in the nanofibers, this result corroborates the results of the mechanical evaluation, where it obtained a higher percentage of elongation. Finally, the films produced in this research have great potential for use as epithelial dressings, being a product of high added value that can be used to assist epithelial regeneration.
Biblioteca responsável: BR68.1