A novel cell line from human eccrine sweat gland duct cells for investigating sweating physiology.

OBJECTIVE: Human eccrine sweat glands (eSG) represent vital components of the skin involved in regulating body temperature. Especially the eccrine duct, which opens directly into the skin surface and releases the aqueous sweat, constitutes the first contact point with topically applied substances. For scientific investigations and to understand the underlying sweating mechanism on a cellular level defined cellular material is beneficial. We, therefore, strived to generate a cell line derived from human eSG duct cells for identifying new mechanisms in sweating control, as such a standardized cell line is currently lacking. MATERIAL AND METHODS: Isolated primary human eSG duct cells were transduced with simian virus 40 large T antigen (SV40T) by lentiviral transduction. Successfully SV40T-transduced clones were selected by single-cell cloning with one clone, named 1D10, being particularly described in this work. RESULTS: In performed cellular investigations, SV40T-transduced duct-derived cells exhibited an extended lifespan with stable population doubling times suggesting its immortality. Besides, 1D10 clonal cell culture demonstrated similarities with parental, primary duct cells regarding gene expression of selected sweat gland-related markers. When combined with primary coil cells in a hanging drop co-culture, those transduced duct-derived cells showed some duct cell-like features. Further, a certain degree of cellular communication and a specific reaction towards substance application was observed. CONCLUSION: Generated and herein described cell line derived from isolated human eSG duct cells is, based on the presented scientific findings, considered as immortal. Besides, this cell line shows some similarity with primary duct cells, although alterations from native glands were detected, among which is loss of expression of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator. Provided some further investigations, presented SV40T-transduced duct-cell derived cell line seems a suited surrogate of primary eccrine duct cells.

OBJECTIF: les glandes sudoripares eccrines (GSe) humaines représentent des composants vitaux de la peau impliqués dans la régulation de la température corporelle, en particulier le canal eccrine, qui s'ouvre directement à la surface de la peau et libère la sueur aqueuse, et constitue le premier point de contact avec les substances appliquées par voie topique. Un matériel cellulaire défini est bénéfique pour les recherches scientifiques et pour comprendre le mécanisme de sudation sous-jacent au niveau cellulaire. Nous nous sommes donc appliqués à générer une lignée cellulaire dérivée de cellules de canaux de GSe humaines pour identifier de nouveaux mécanismes dans le contrôle de la transpiration, car ce type de lignée cellulaire standardisée n'est actuellement pas disponible. MATÉRIELS ET MÉTHODES: des cellules primaires isolées de canaux de GSe humaines ont été transduites avec le grand antigène T du virus simien 40 (SV40T) par transduction lentivirale. Les clones SV40T transduits avec succès ont été sélectionnés par clonage unicellulaire, et un clone, nommé 1D10, est décrit plus particulièrement dans les présents travaux. RÉSULTATS: dans les investigations cellulaires réalisées, les cellules transduites avec le SV40T présentaient une durée de vie plus longue, avec des temps de doublement de la population stables suggérant leur immortalité. En outre, la culture cellulaire clonale 1D10 présentait des similitudes avec les cellules de canaux primaires parentaux concernant l'expression génique de certains marqueurs liés aux glandes sudoripares. Lorsqu'elles ont été associées à des cellules spirale primaires dans une co-culture suspendue, ces cellules transduites dérivées des canaux présentaient certaines caractéristiques des cellules de canaux. De plus, un certain degré de communication cellulaire et une réaction spécifique à l'application de substances ont été observés. CONCLUSION: la lignée cellulaire produite et décrite ici, dérivée de cellules isolées de canaux de GSe humaines, est, d'après les résultats scientifiques présentés, considérée comme immortelle. En outre, cette lignée cellulaire présente une certaine similarité avec les cellules de canaux primaires, bien que des modifications des glandes natives aient été détectées, dont la perte d'expression du régulateur de la conductance transmembranaire de la mucoviscidose. Sous réserve de recherches supplémentaires, la lignée cellulaire dérivée de cellules de canaux primaires transduites avec le SV40T présentée ici semble être un substitut approprié des cellules de canaux eccrines primaires.

Carbachol dimers with primary carbamate groups as homobivalent modulators of muscarinic receptors.

Although agonists and antagonists of muscarinic receptors have been known for long time, there is renewed interest in compounds (such as allosteric or bitopic ligands, or biased agonists) able to differently and selectively modulate these receptors. As a continuation of our previous research, we designed a new series of dimers of the well-known cholinergic agonist carbachol. The new compounds were tested on the five cloned human muscarinic receptors (hM1-5) expressed in CHO cells by means of equilibrium binding experiments, showing a dependence of the binding affinity on the length and position of the linker connecting the two monomers. Kinetic binding studies revealed that some of the tested compounds were able to slow the rate of NMS dissociation, suggesting allosteric behavior, also supported by docking simulations. Assessment of ERK1/2 phosphorylation on hM1, hM2 and hM3 activation showed that the new compounds are endowed with muscarinic antagonist properties. At hM2 receptors, some compounds were able to stimulate GTPγS binding but not cAMP accumulation, suggesting a biased behavior. Classification, Molecular and cellular pharmacology.