Dual role of monocyte-derived dendritic cells in Trypanosoma cruzi infection.

Pathogens can cause inflammation when inoculated into the skin. The vector-transmitted protozoan parasite Trypanosoma cruzi induces poor cellular-infiltration and disseminates, causing high mortality in the experimental model. Here, we characterized the inflammatory foci at the parasite inoculation site and secondary lymphoid organs using a murine model. While no macrophages and few neutrophils and monocytes (Mo) were recruited into the skin, T. cruzi infection elicited the mobilization of Ly6C+ Mo to draining lymph nodes and spleen. Over time, this population became enriched in CD11b+ Ly6C+ CD11c+ MHCII+ CD86+ cells resembling inflammatory dendritic cells (DCs). Adoptive transfer of Ly6C+ Mo purified from the bone marrow of CD11c-GFP transgenic mice confirmed the monocytic origin of Ly6C+ DCs found in the spleen of infected animals. Isolated Mo-derived cells not only produced TNF-α and nitric oxide, but also IL-10 and displayed a poor capacity to induce lymphoproliferation. Ablation of Mo-derived cells by 5-fluorouracil confirmed their dual role during infection, limiting the parasite load by inducible nitric oxide synthase-related mechanisms and negatively affecting the development of anti-parasite T-cell response. This study demonstrated that consistent with their antagonistic properties, these cells not only control the parasite spreading but also its persistence in the host.

Impairment in natural killer cells editing of immature dendritic cells by infection with a virulent Trypanosoma cruzi population.

Early interactions between natural killer (NK) and dendritic cells (DC) shape the immune response at the frontier of innate and adaptive immunity. Activated NK cells participate in maturation or deletion of DCs that remain immature. We previously demonstrated that infection with a high virulence (HV) population of the protozoan parasite Trypanosoma cruzi downmodulates DC maturation and T-cell activation capacity. Here, we evaluated the role of NK cells in regulating the maturation level of DCs. Shortly after infection with HV T. cruzi, DCs in poor maturation status begin to accumulate in mouse spleen. Although infection induces NK cell cytotoxicity and cytokine production, NK cells from mice infected with HV T. cruzi exhibit reduced ability to lyse and fail to induce maturation of bone marrow-derived immature DCs (iDCs). NK-mediated lysis of iDCs is restored by in vitro blockade of the IL-10 receptor during NK-DC interaction or when NK cells are obtained from T. cruzi-infected IL-10 knockout mice. These results suggest that infection with a virulent T. cruzi strain alters NK cell-mediated regulation of the adaptive immune response induced by DCs. This regulatory circuit where IL-10 appears to participate might lead to parasite persistence but can also limit the induction of a vigorous tissue-damaging T-cell response.

Immunogenicity of Trypanosoma cruzi strains determined by neutralization test

Los tripomastigotes (trip) de la cepa CA-I de Trypanosoma Cruzi (cepa escasamente letal para el ratón) presentaron anticuerpos adheridos a sus antígenos de membrana cuando se los obtuvo a los 25-28 días pi y se los procesó a 4-C; a 37-C se negativizaron dentro de los 10-15 min. Estos trip liberados de los complejos antígeno-anticuerpo demostraron ser um blanco adecuado para la detección de anticuerpos neutralizantes; es así como trip - CA-I preincubados con un suero anti-RA de conejo (en el que se había demostrado la existencia de anticuerpos neutralizantes contra la cepa homóloga) indujeron en el ratón un pico de parasitemia muy bajo, de breve duración y aparición tardía. Cuando estos trip se preincubaron con un antisuero homólogo el efecto fue menos marcado produciéndose sólo una demora en la curva de parasitemia para alcanzar a partir de los 34 días pi valores que no diferían significativamente de los registrados en el grupo control . Cuando estos sueros se evaluaron empleando como célula blanco trip-RA y la técnica estandar de neutralización, no se registró reactividad en los sueros anti - CA-I (promedio de sobrevida de ratones inoculados con trip-RA preincubados con suero de conejo: a) normal: 13 ñ 1 días, b anti-CA-I: 14 ñ 1 yc) anti-RA: 20 ñ 1). Para la cepa RA se demostró además que la potencia de la capacidad neutralizante de un suero estaba en función del tamaño de la dosis infectante que se había empleado para producir-lo; estos estudios se realizaron con inmunosueros producidos en ratón, y si bien todos los inmunosueros ensayados fueron reactivos, aquéllos preparados con inóculos de hasta 10**2 trip fueron los más potentes...

Isolation by Percoll gradient centrifugation and radiolabeling of bloodstream forms of Trypanosoma cruzi

Se diseñó un método para purificar las formas sanguíneas de T. cruzi utilizando un gradiente de Percoll contínuo de 6 cm de longitud (Percoll 60% en "HSA-buffer", preformado por centrifugación a 20.000 g durante 90 min a 4-C en un rotor Sorvall SS 34). El mismo se sembró con 6 x 10**7 elementos (parásitos semipurificados de glóbulos rojos por centrifugación diferencial a partir de sangre desfibrinada) y se centrifugó a 800 g, 15 min. Los parásitos se ubicaron en 1,063 a 1,064 g/ml, existiendo una buena resolución entre ellos y los elementos figurados de la sangre. Los parásitos purificados incorporaron H-uridina y dieron valores del 23% precipitables por TCA. La viabilidad de los mismos fue totalmente preservada según lo evidenciado en los ensayos de infectividad "in vivo"

Trypanossoma cruzi: diferencias en el requerimiento de protectores proteicos presentadas por dos cepas argentinas / Trypanosoma cruzi: differences in the requiriment of proteic protectors presented by 2 Argentinian strains

Se estandarizaron los requerimientos de protectores proteícos para los tripomastigotes de las cepas CA-I y RA de Trypanosoma cruzi. Mientras que para la primera fue necesario 5% de suero o albúmina en las soluciones de lavado y/o de suspensión, para la RA se necesitó 1%. La viabilidad de los parásitos fue establecida por la movilidad evidenciada en las preparaciones microscópicas frescas y por inoculación al ratón. Esta diferencia señala una característica más acerca del comportamiento distinto comunicado para la cepa CA-I con relación a la RA

Citocromos en diferentes estadíos, cepas y poblaciones de Trypanosoma cruzi / Cytochromes in different stages, strains and populations of Trypanosoma cruzi

Los espectros diferenciales de muestras "reducida menos oxidada" (Red-Ox) y "reducida. CO menos reducida" (Re. CO-Red) de tripomastigotes metacíclicos del Trypanosoma cruzi (cepa Tulahuen) revelaron la presencia de los citocrómos aa3, b, c555 y o. Espectros concordantes se obtuvieron con la fracción mitocondrial de la forma epimastigote de la misma cepa, después de filtrar las membranas por Sephadex G-50 para excluir hemoproteínas espúreas provenientes del medio de cultivo o hemoproteínas solubles (hemoglobina, peroxidasa, catalasa, etc.), o citocrómos P-420 y P-450. El tratamiento de la fracción mitocondrial cruda con guanidina y colato de Na y la formación de complejos con cianuro, revelaron que el citocrómo o es un constituyente integral de esas membranas. El análisis de los piridinahemocrómos provenientes de los citocrómos mitocondriales demostró la presencia de los hemos A, B y C. Una banda espectral a 625 nm en los espectros de los tripomastigotes, en las membranas mitocondriales, y en los piridina-hemocrómos indicó la presencia de un citocrómo d. Un examen comparativo del contenido en citocrómos o y b de una serie de poblaciones de T. cruzi, provenientes originariamente en su mayoría de pacientes con formas agudas o crónicas de la enfermedad de Chagas, demostró variabilidad en el contenido en citocrómos y falta de correlación de este parámetro con las propiedades biológicas del parásito, en particular con la letalidad para el ratón

Relación huésped-parásito en T. cruzi / Host-parasite relation in T. cruzi

Se tratan aspectos de la relación huésped-parásito en Trypanosoma cruzi: capacidad del mismo para invadir células del huésped y susceptibilidad a la infección de éste; capacidad antigénica (detección y formación de anticuerpos) de Trypanosoma cruzi para estimular una respuesta inmune; capacidad individual del huésped para montar esta respuesta; mecanismos inducidos por el parásito para su defensa (inmunosupresión); y, ciclo biológico de Trypanosoma cruzi