Advancement of Autogenous Vaccines in the Poultry Industry.

Autogenous vaccines, also known as "custom" vaccines, have become an essential instrument in the production veterinarian's toolbox for the control of emerging and evolving diseases. Autogenous vaccines require a reduced burden of U.S. Department of Agriculture licensing, making them rapidly accessible. Autogenous vaccines have made significant advancements in the ability to reduce disease within the poultry industry from a combination of several different advancements in regulation requirements, rapid and accurate diagnostic assessments, and improvements in manufacturing. The use of autogenous vaccines by poultry health professionals has also increased, and these custom-made products have been instrumental in combating diseases resulting from antigenic variants such as salmonellosis, colibacillosis, infectious coryza, infectious bursal disease, inclusion body hepatitis, viral enteritis, and viral arthritis and tenosynovitis.

Estudio recapitulativo- Avance de las vacunas autógenas en la industria avícola Las vacunas autógenas, también conocidas como vacunas "personalizadas, elaboradas de acuerdo con las necesidades del cliente" ("custom"), se han convertido en un instrumento esencial en el inventario de herramientas del veterinario de producción para el control de enfermedades emergentes y en evolución. Las vacunas autógenas requieren un procedimiento reducido para obtener la licencia por parte del Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, lo que las hace rápidamente accesibles. Las vacunas autógenas han logrado avances significativos en la capacidad de reducir enfermedades dentro de la industria avícola gracias a una combinación de varios avances diferentes en los requisitos regulatorios, evaluaciones de diagnóstico rápidas y precisas y mejoras en la fabricación. También ha aumentado el uso de vacunas autógenas por parte de los profesionales de la salud avícola, y estos productos hechos a medida han sido fundamentales para combatir enfermedades resultantes de variantes antigénicas como la salmonelosis, la colibacilosis, la coriza infecciosa, la enfermedad infecciosa de la bolsa, hepatitis con cuerpos de inclusión, la enteritis viral y la artritis y tenosinovitis virales.

Evaluation of Pathogenicity and Antigenicity of Avian Reoviruses and Disease Control Through Vaccination.

Avian reoviruses are ubiquitous in poultry production worldwide and can be transmitted vertically or horizontally among chickens. The pathogenicity of reoviruses can range from very pathogenic viruses that affect multiple tissues and organs to apathogenic. Avian reoviruses have been associated with many disease presentations, and two of the most economically significant diseases are viral arthritis/tenosynovitis and viral enteritis. Viral arthritis/tenosynovitis has been recognized since the 1950s and essentially disappeared after development of attenuated live and inactivated vaccines in the 1980s but re-emerged in 2011 due to the emergence of antigenic variants. Viral enteritis was first recognized in the 1970s and became the predominant reovirus-associated disease between 2006 and 2011 due to the emergence of pathogenic enterotropic reoviruses. Pathogenicity of reovirus isolates can be evaluated in several ways, including inoculation of day-old broiler chicks with low maternal reovirus antibody titers via the foot pad route or the oral and intratracheal route. Pathogenic reoviruses induce foot pad inflammation within 3 days of inoculation, and more pathogenic reoviruses are able to disseminate to and damage visceral organs. Only reovirus infections in young chickens result in disease due to age-related resistance to disease development. Reoviruses exist as many serotypes and subtypes with various degrees of interrelatedness. The earliest reovirus strains in the United States were antigenically related to each other and are referred to as S1133-like viruses, but in the 2000s, reoviruses emerged that were antigenically different from the S1133-like viruses. Virus neutralization assay using polyclonal antisera has been used to classify the emerging variant reoviruses into serogroups. The first reovirus vaccines were developed in the 1970s, and by the 1980s breeder vaccination programs were established that protected breeders, prevented vertical transmission of reovirus, and provided maternal immunity to the progeny during the crucial first 3 wk of life. With the emergence of antigenic variant reoviruses in the 2000s, vaccination programs using S1133-like vaccines became ineffective. The poultry industry has relied on vaccination with autogenous inactivated reovirus vaccines to alleviate losses due to viral arthritis/tenosynovitis and viral enteritis. Virus isolates used for autogenous vaccines must be updated regularly and are selected based on pathotype, serotype, or Sigma C (σC) genotype. Live attenuated S1133 vaccines are still used in breeder chickens for the priming effect, followed by one or more injections of the inactivated licensed and/or autogenous vaccines. The route of vaccination and the number of doses received by breeder chickens are very important for a sufficient antibody response. Intramuscular vaccination with inactivated vaccines elicits the highest antibody response, while subcutaneous vaccination with inactivated vaccines elicits a low antibody response. More recently, research has focused on development of alternative vaccines and vaccination strategies. An inactivated variant reovirus vaccine was developed that elicits protection against multiple variant serotypes, and experimental recombinant and subunit vaccines have been described and show potential. More research needs to be done to develop better vaccines, vaccination programs, and other control measures for preventing reovirus infection, transmission, and losses due to disease.

Estudio recapitulativo- Evaluación de patogenicidad y antigenicidad de reovirus aviares y control de enfermedades mediante vacunación Los reovirus aviares son ubicuos en la producción avícola en todo el mundo y pueden transmitirse por vías vertical u horizontal entre los pollos. La patogenicidad de los reovirus puede variar desde virus muy patógenos que afectan múltiples tejidos y órganos hasta virus apatógenos. Los reovirus aviares se han asociado con muchas presentaciones de enfermedades, y dos de las enfermedades más significativas desde el punto de vista económico son la artritis/tenosinovitis viral y la enteritis viral. La artritis/tenosinovitis viral se ha reconocido desde la década de 1950 y esencialmente desapareció después del desarrollo de vacunas vivas atenuadas e inactivadas en la década de 1980, pero resurgió en 2011 debido a la aparición de variantes antigénicas. La enteritis viral se reconoció por primera vez en la década de 1970 y se convirtió en la enfermedad predominante asociada a reovirus entre 2006 y 2011 debido a la aparición de reovirus enterotrópicos patógenos. La patogenicidad de los aislados de reovirus se puede evaluar de varias maneras, incluida la inoculación de pollos de engorde de un día con títulos bajos de anticuerpos maternos contra el reovirus a través de la vía del cojinete almohadilla plantar o la vía oral e intratraqueal. Los reovirus patógenos inducen la inflamación de las almohadillas de las patas dentro de los tres días posteriores a la inoculación, y más reovirus patógenos pueden diseminarse y dañar los órganos viscerales. Solo las infecciones por reovirus en pollos jóvenes resultan en enfermedades debido a la resistencia relacionada con la edad al desarrollo de la enfermedad. Los reovirus existen como muchos serotipos y subtipos con varios grados de interrelación. Las primeras cepas de reovirus en los Estados Unidos estaban relacionadas antigénicamente entre sí y se conocen como virus relacionados a la cepa S1133, pero en la década de 2000 surgieron reovirus que eran antigénicamente diferentes de los virus relacionados con S1133. Se ha utilizado el ensayo de neutralización de virus con antisueros policlonales para clasificar las variantes de reovirus emergentes en serogrupos. Las primeras vacunas contra el reovirus se desarrollaron en la década de 1970, y en la década de 1980 se establecieron programas de vacunación para reproductores que protegían a los reproductores, prevenían la transmisión vertical de reovirus y proporcionaban inmunidad materna a la progenie durante las cruciales primeras tres semanas de vida. Con la aparición de variantes antigénicas de reovirus en la década de 2000, los programas de vacunación con vacunas relacionadas con la cepa S1133 se volvieron ineficaces. La industria avícola se ha basado en la vacunación con vacunas autógenas de reovirus inactivado para aliviar las pérdidas debidas a artritis/tenosinovitis viral y enteritis viral. Los aislados de virus utilizados para las vacunas autógenas deben actualizarse con regularidad y se seleccionan según el patotipo, el serotipo o el genotipo Sigma C (σC). Las vacunas vivas atenuadas S1133 todavía se usan en pollos reproductores para el efecto de preparación, seguidas de una o más inyecciones de las vacunas inactivadas autorizadas y/o autógenas. La vía de vacunación y el número de dosis recibidas por los pollos reproductores son muy importantes para una respuesta de anticuerpos suficiente. La vacunación intramuscular con vacunas inactivadas provoca la mayor respuesta de anticuerpos, mientras que la vacunación subcutánea con vacunas inactivadas provoca una baja respuesta de anticuerpos. Más recientemente, la investigación se ha centrado en el desarrollo de vacunas alternativas y estrategias de vacunación. Se desarrolló una vacuna de reovirus variante inactivada que provoca protección contra múltiples serotipos variantes, y se han descrito vacunas experimentales recombinantes y de subunidades que muestran potencial. Se necesita más investigación para desarrollar mejores vacunas, programas de vacunación y otras medidas de control para prevenir la infección, transmisión y pérdidas por reovirus debido a la enfermedad.

Rotavirus A Associated with Clinical Disease and Hepatic Necrosis in California Pigeons (Columba livia domestica).

Retrospective analysis of pigeon necropsy submissions to the California Animal Health and Food Safety Laboratory System from 2000 to 2018 revealed 14 submissions diagnosed with rotavirus A hepatic necrosis or "reoviruslike" viral hepatitis. Nine of the 14 submissions (64%) occurred in 2018. Submissions were racing pigeons and squab breeders from flocks with increased mortality. Juvenile and adult pigeons were submitted with a history of depression, diarrhea, regurgitation, labored breathing, and weakness. Flock morbidity peaked at 80% and mortality at 28%. The most consistent findings on postmortem examination were variably congested, mottled, and enlarged livers and spleens. Microscopically, mild to severe hepatic necrosis was observed with variable bile duct hyperplasia, sinusoidal congestion, hemosiderosis, and portal lymphoplasmacytic inflammation. Rotavirus A was detected in hepatocytes and inflammatory cells by immunohistochemistry. Negative-stain electron microscopy identified viral particles consistent with a member of Reoviridae in all negatively stained liver homogenates. Eleven cases were analyzed by reverse transcriptase-PCR targeting rotavirus A viral protein (VP) 6 and VP7 genes. Subsequent phylogenetic analysis of the VP6 and VP7 sequences compared to published Chinese, Nigerian, and German rotavirus A VP6 and VP7 sequences demonstrated the formation of two and three distinct clades, respectively. To the authors' knowledge, rotavirus A hepatic necrosis in pigeons has not been previously reported in the United States and represents a significant emerging disease for the pigeon industry due to the potential for high flock mortality and lost production.

Rotavirus A asociado con enfermedad clínica y necrosis hepática en palomas de California (Columba livia domestica). El análisis retrospectivo de los casos de necropsias de palomas remitidos al Sistema de Laboratorio de Salud Animal y Seguridad Alimentaria del Estado de California entre los años 2000 a 2018 reveló 14 casos con diagnóstico de necrosis hepática por rotavirus A, o hepatitis viral ocasionada por "virus similares a reovirus". Nueve de los 14 casos (64%) ocurrieron en el año 2018. Los casos fueron de palomas de competencia y de criadores de pichones de parvadas con aumento en la mortalidad. Se presentaron palomas jóvenes y adultas con antecedentes de depresión, diarrea, regurgitación, dificultad para respirar y debilidad. La morbilidad mayor fue de un 80% como máximo y la mortalidad fue de un 28%. Los hallazgos más consistentes en el examen post mortem incluyeron hígados y bazos con congestión, apariencia moteada y aumento de tamaño de forma variable. Microscópicamente, se observó necrosis hepática de leve a severa con hiperplasia variable de los conductos biliares, congestión de sinusoides, hemosiderosis e inflamación linfoplasmocítica portal. Se detectó rotavirus A en hepatocitos y células inflamatorias por inmunohistoquímica. La microscopía electrónica de tinción negativa identificó partículas virales consistentes con virus posiblemente miembros de la familia Reoviridae en todos los homogenizados de hígado teñidos negativamente. Se analizaron once casos mediante transcripción reversa y PCR dirigida a los genes de la proteína viral (VP) 6 y VP7 del rotavirus A. El análisis filogenético posterior de las secuencias de los genes VP6 y VP7 cuando se compararon con secuencias de genes VP6 y VP7 de rotavirus A de China, Nigeria y de Alemania previamente publicadas demostró la formación de dos y tres clados distintos, respectivamente. De acuerdo con el conocimiento de los autores, la necrosis hepática por rotavirus A en palomas no se había reportado previamente en los Estados Unidos y representa una enfermedad emergente importante para la industria de las palomas debido a su potencial de alta mortalidad de la parvada y a las pérdidas en la producción.

MicroRNAs of Gallid and Meleagrid herpesviruses show generally conserved genomic locations and are virus-specific.

Many herpesviruses, including Marek's disease viruses (MDV1 and MDV2), encode microRNAs. In this study, we report microRNAs of two related herpesviruses, infectious laryngotracheitis virus (ILTV) and herpesvirus of turkeys (HVT), as well as additional MDV2 microRNAs. The genome locations, but not microRNA sequences, are conserved among all four of these avian herpesviruses. Most are clustered in the repeats flanking the unique long region (I/TR(L)), except in ILTV which lacks these repeats. Two abundant ILTV microRNAs are antisense to the immediate early gene ICP4. A homologue of host microRNA, gga-miR-221, was found among the HVT microRNAs. Additionally, a cluster of HVT microRNAs was found in a region containing two locally duplicated segments, resulting in paralogous HVT microRNAs with 96-100% identity. The prevalence of microRNAs in the genomic repeat regions as well as in local repeats suggests the importance of genetic plasticity in herpesviruses for microRNA evolution and preservation of function.

Deep sequencing of chicken microRNAs.

BACKGROUND: The use of new, deep sequencing technologies has greatly accelerated microRNA discovery. We have applied this approach to the identification of chicken microRNAs and to the comparison of microRNAs in chicken embryo fibroblasts (CEF) infected with Marek's disease virus (MDV) to those present in uninfected CEF. RESULTS: We obtained 125,463 high quality reads that showed an exact match to the chicken genome. The majority of the reads corresponded to previously annotated chicken microRNAs; however, the sequences of many potential novel microsRNAs were obtained. A comparison of the reads obtained in MDV-infected and uninfected CEF indicates that infection does not significantly perturb the expression profile of microRNAs. Frequently sequenced microRNAs include miR-221/222, which are thought to play a role in growth and proliferation. A number of microRNAs (e.g., let-7, miR-199a-1, 26a) are expressed at lower levels in MDV-induced tumors, highlighting the potential importance of this class of molecules in tumorigenesis. CONCLUSION: Deep sequencing technology is highly suited for small RNA discovery. This approach is independent of comparative sequence analysis, which has been the primary method used to identify chicken microRNAs. Our results have confirmed the expression of many microRNAs identified by sequence similarity and identified a pool of candidate novel microRNAs.