RESUMO
Em estudo anterior, as espécies de enterobactérias apresentando perfis variados de resistência aos antimicrobianos foram detectadas em 20% dos sítios com lesões periodontais de pacientes sadios do ponto de vista sistêmico. Tais cepas microbianas foram submetidas a investigações com o intuito de determinar à expressão de enzimas hidrolíticas para substratos diversos, a multirresistência aos agentes antimicrobianos e os mecanismos de resistência aos antimicrobianos da classe dos B lactâmicos. A maioria das amostras expressou atividade de gelatinase (65%), caseinase (30%) e elastase (10%). Lipase, lecitinase e DNase foram observadas apenas para Serratia marcescens. A multirresistência (considerado como a resistência a pelo menos dois agentes antimicrobianos de famílias diferentes) foi observada em 56% das amostras isoladas. A maioria das cepas foi resistente à ampicilina (93,75%) e amoxicilina/ácido clavulânico (81,25%). Investigações sobre a resistência aos antibióticos B-lactâmicos mostraram que três amostras resistentes à cefalosporinas de 2ª geração, apresentaram perfis plasmidiais de diferentes pesos moleculares. A expressão fenotípica de B-lacatamases, foi detectada nas cepas de Enterobacter cloacae (PcOM46 e PcOM5) e S. marcescens (PcOM63). No entanto, na análise molecular, não foi possível confirmar a expressão fenotípica de diferentes B-lactamases, com exceção do E. cloacae PcOM46, que apresentou amplificação para AmpC e blatem. Embora sensível à maioria dos antibióticos B-lactâmicos (exceção feita à ampicilina e amoxicilina/ácido clavulânico), amostra de S. marcescens PcOM68 apresentou amplificação para o gene blashv. Os experimentos de conjugação não detectaram a transferência de plasmídios para uma cepa de Escherichia coli K12 sensível aos B-lactâmicos, o mesmo ocorreu nos procedimentos de transformação por eletroporação e por CaCI2, sugerindo uma resistência dependente de genes cromossomiais. A expressão de diferentes atividades enzimáticas...
In a previous study, the enterobacterial species were detected in 20% of systemically healthy patients presenting periodontal lesions, with diferent profiles of antimicrobial resistance. These microbial strains were investigated in view to determine the expression of hydrolytic enzymes for diverse substrates, multiresistance to antimicrobial agents, and the mechanisms of resistance to beta-lactam antibiotics. The enzymes related to bacterial virulence were detected phenotypically in 90% isolates. The proteolytic activity displayed by the isolates against gelatin, casein and elastin was detected in 65%, 30% and 10%, respectively. Lipase, lecithinase, and DNase were observed only for Serratia marcescens strains. Multi-resistant phenotypes (considered as the resistance to at least two antimicrobial agents from different families) were observed for 56% enterobacterial isolates. Most of the strains were resistant to ampicillin (93.75%) and amoxicillin/clavulanic acid (81.25%). Investigations concerned to the resistance to beta-lactam antibiotics demonstrated that three bacterial strains resistant to penicilins and 2nd generation cephalosporins, had detectable plasmids. The extended resistance to B-lactams was detected phenotypically for E. cloacae (PcOM46 and PcOM5) and S. marcescens (PcOM63) strains. However, the molecular detection of extended spectrum beta-lactamase failed to confirm the phenotypic expression of different B-lactamases, with exception to the E. cloacae PcOM46 isolate, which presented amplification for both ampC and blatem. Although sensitive to most of the B-lactam antibiotics (exception made to ampicilin and ampicilin/clavulanate), the strain S. marcescens PcOM68 was shown to amplify the blashv gene. Plasmid transference by both conjugation and transformation procedures failed to detect the resistance by a B-lactam-sensitive strain (E. coli K12), suggesting a chromosomal dependent resistance. The expression of varied enzymatic activities...