RESUMO
After the worldwide cholera epidemic in 1993, permanent environmental monitoring of hydrographic basins was established in Pernambuco, Brazil, where cholera is endemic. After a quiescent period, 4 rfbN (serogroup O1) positive water samples that were culture negative were detected by multiplex single-tube nested PCR (MSTNPCR); 2 of these were also ctxA (cholera toxin) positive. From May to June 2012, 30 V. cholerae O1 isolates were obtained by culturing samples. These isolates were analyzed for the presence of virulence genes by PCR, intergenic spacer region 16S-23S PCR (ISR-PCR), and pulsed field gel electrophoresis (PFGE). The isolates were positive for the rfbN gene and negative for the assessed pathogenic genes and were classified into 2 groups by ISR and the same profile by PFGE. Close genetic similarity was observed between them (2012) and environmental strains from 2004 to 2005, indicating the permanence of endemic V. cholerae O1 in the region.
Assuntos
DNA Bacteriano/análise , Reservatórios de Doenças/microbiologia , Vibrio cholerae O1/isolamento & purificação , Microbiologia da Água , Proteínas de Bactérias/análise , Brasil , DNA Intergênico/análise , Eletroforese em Gel de Campo Pulsado , Reação em Cadeia da Polimerase Multiplex/métodos , RNA Ribossômico 16S/análise , RNA Ribossômico 23S/análise , Vibrio cholerae O1/classificação , Vibrio cholerae O1/genética , Fatores de Virulência/análiseRESUMO
A peste, infecção causada pela bactéria Yersinia pestis, é uma zoonose primária de roedores, geralmente transmitida por pulgas, que infecta humanos e outros mamíferos. O diagnóstico bacteriológico tradicional da peste pode ser comprometido pela qualidade das amostras coletadas em áreas remotas, transportadas inadequadamente e recebidas no laboratório semanas após a coleta. Técnicas de diagnóstico molecular dispensam o cultivo e são exequíveis quando as bactérias estão inviáveis ou em amostras multicontaminadas. Métodos moleculares convencionais (PCR, qPCR, Nested-PCR) requerem equipamentos sofisticados para amplificação e visualização dos resultados, impedindo seu uso em laboratórios menos equipados. A amplificação isotérmica mediada por loop (Loop-mediated isothermal amplification - LAMP), uma variação da PCR convencional, utiliza enzima que permite amplificação isotérmica, apresenta alta especificidade, sensibilidade, rapidez e custo reduzido, sendo utilizada na detecção de diversos patógenos. Esta técnica emprega de quatro a seis primers e a enzima Bst DNA polimerase, que além da atividade de síntese, atua abrindo a fita dupla de DNA. O resultado da amplificação é visualizado no próprio tubo, a olho nu. O objetivo deste projeto foi aplicar a técnica LAMP no desenvolvimento de um teste para o diagnóstico da peste. Foram construídos cinco primers específicos para amplificação do gene caf1, exclusivo de Y. pestis, utilizados em ensaios com o DNA da cepa Y. pestis A1122, para determinar as concentrações ótimas dos reagentes, temperatura de incubação (60°C, 63°C e 65°C) e tempo de duração da reação (15, 30, 45, 60 e 90 minutos). As reações foram incubadas em banho maria. A amplificação foi visualizada diretamente nos tubos contendo SYBR® Safe ou SYBR® Green I. Foi observado que a partir de 45 minutos de reação ocorre amplificação do gene caf1, nas três temperaturas testadas. Além disso, a técnica mostrou-se específica e sensível, detectando até 10 pg de DNA de Y. pestis.